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FluorPen手持式葉綠素熒光儀（分離葉夾）
更新時間：2025-07-01
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FluorPen手持式葉綠素熒光儀（分離葉夾）采用調試式熒光測量技術，可設置多種參數，方便測量多種植物葉綠素熒光。外觀小巧，方便攜帶，設計新穎，操作簡單，經濟耐用，精度高穩定性好。自帶暗適應葉夾，容易操作。
| 品牌 | 其他品牌 | 產地類別 | 進口 |
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FluorPen手持式葉綠素熒光儀（分離葉夾）
FluorPen手持式葉綠素熒光儀（分離葉夾）采用調試式熒光測量技術，可設置多種參數，方便測量多種植物葉綠素熒光。外觀小巧，方便攜帶，設計新穎，操作簡單，經濟耐用，精度高穩定性好。自帶暗適應葉夾，容易操作。
應用領域
適用于光合作用研究和教學，植物及分子生物學研究，農業、林業，生物技術領域等。研究內容涉及光合活性、脅迫響應、農藥藥效測試、突變等。
植物光合特性和代謝紊亂篩選- 生物和非生物脅迫的檢測
- 植物抗脅迫能力或者易感性研究
- 代謝混亂研究
- 長勢與產量評估
- 植物——微生物交互作用研究
- 植物——原生動物交互作用研究
典型樣品
- 植物葉片
- 其它
工作原理
利用調制式熒光測量技術，采用LED光源，選擇儀器內置的給光方案測量并計算葉綠素熒光的各種參數。
功能特點：實驗過程和測量參數
- Ft：瞬時葉綠素熒光、暗適應完成后Ft＝Fo
- QY：光量子效率，表示光系統II 的效率，等于Fv/Fm(暗適應完成的樣品)或Fv’/Fm’ (光適應完成的樣品)
- OJIP：葉綠素熒光瞬時OJIP曲線是反應光合作用過程中植物生理時間過程的重要信號。
- NPQ：非光化學淬滅，表示光合作用中葉綠素吸收光能后以熱形式散失掉的部分。
- 光曲線：Qy對不同光強的適應曲線。
- PAR測量：可在熒光儀上顯示PAR值，可計算20次檢測值的平均。
- 另外還具有GPS定位功能
技術參數
- 測量參數：Fo, Ft, Fm, Fm´,QY， OJIP, NPQ 1,2 和光曲線1,2,3。
- 測量光：藍光（可選紅光或白光）
- 光化學光和飽和光：0–3000µmol (photons).m-2.s-1可調
- 波長檢測范圍：697nm-750nm
- BOIS：可升級
光曲線測量方案 |
通訊：USB接口
- 存儲：4M
- 數據存儲：100,000個
- 顯示：2 x 8字符黑白液晶屏
- 鍵盤：密封防水設計2鍵
- 自動關機：5分鐘無操作
- 電源：4 AAA堿性電池或充電電池
- 電池壽命：持續測量70 h
- 低電報警
- 尺寸：120 x 57 x 30 mm; 4.7" x 2.2" x 1.2"
- 重量：180 g, 6.5 oz
- 操作條件：溫度：0 ～ 55 ºC；相對濕度：0 ～ 95 %非冷凝
- 存儲條件：溫度：-10 to +60 ºC；相對濕度：0 ～ 95 %非冷凝
- 軟件：FluorPen2.0, Windows 2000,XP或更高*，實時顯示和遙控，植入GPS繪圖，EXCEL輸出
- PAR傳感器：讀數單位µmol(photons)/m².s，可顯示讀數，檢測范圍400-700 nm
操作軟件與實驗結果
配置型號指南：
標準配置——FP100max-D + GPS模塊 + PAR傳感器：功能完備
簡化配置——FP100max-D：無PAR數據+ 無GPS數據
產地: 歐洲
參考文獻
Harding S.A., Jarvie M.M., Lindroth R.L. and Tsai Ch-J. (2009): A comparative analysis of phenylpropanoid metabolism, N utilization, and carbon partitioning in fast- and slow-growing Populus hybrid clones. J. Exp. Botany, Vol. 60 (12), pp. 3443-3452.
Klem K. and Bajerova E. (2008): Adjustment of herbicide dose in sugar beet based on non-invasive chlorophyll fluorescence measurements. AgEng 2008 Conference, Hersonissos, Crete.
附：參數列表
Bckg = background
Fo: = F50µs; fluorescence intensity at 50 µs
Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)
Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)
Fm: = maximal fluorescence intensity
Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)
Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)
Fm / Fo = Fm / Fo
Fv / Fo = Fv / Fo
Fv / Fm = Fv / Fm
Mo = TRo / RC - ETo / RC
Area = area between fluorescence curve and Fm
Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)
Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)
N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA
Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)
Phi_o = I - Vj
Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o
Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)
Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)
ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)
TRo / RC = Mo . (I / Vj)
ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)
DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)
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